Главная / Без рубрики / Блокада для лечения уха у собаки

Блокада для лечения уха у собаки

Воспаление наружного уха у собак регистрируют довольно часто. Заболевание иногда протекает длительное время.

Как известно, для лечения данного заболевания предложено много различных способов: блокада ушных нервов; обработка йодглицерином, 2% раствором нитрата серебра, борным спиртом, на стойкой сабура, перекисью водорода; промывание наружного слухового прохода теплым раствором гидрокарбоната натрия и применение после этого танина с глицерином (1:20), 2% раствора цинка сульфата, креолина (1:200), этакридина лактата (1:500), присыпка порошком белого стрептоцида. При сильном зуде ушной раковины назначают ментол на вазелиновом масле 1 — 5% концентрации, жидкость состава: анестезин — 1,0, новокаин — 1,0, ментол 1,0, спирт этиловый 70 — 100,0 и т. д.

Однако эти методы не всегда дают положительный терапевтический эффект, поэтому решено было испытать для лечения воспаления наружного уха химопсин, применяемый в медицине при хронических гнойных отитах.

Наш клинический материал основывается на 11 больных собаках разного пола, возраста, упитанности и породы, давность заболевания от двух до 11 дней у четырех пациентов, от одного до двух месяцев у четырех, от шести месяцев до года у трех животных. У пяти собак наблюдалось поражение одного, у шести — обоих ушей.

Животные поступали с ярко выраженными клиническими признаками болезни. При острой форме воспаления ( с давностью до двух месяцев) собаки трясли ушами, терли их, чесали лапами, держали голову с наклоном в сторону пораженного уха. Из наружного слухового прохода выделялось истечение серозно-гнойного, буроватого цвета, зловонного запаха. При пальпации в основании ушной раковины отчетливо прослушивались звуки плеска. Внутренняя поверхность ушной раковины гиперемированная, отечная, влажная, болезненная.

При хроническом течении болезни (с давностью от шести месяцев до года) наблюдались такие же клинические признаки, но менее выраженные.

После обработки ушной раковины и наружного слухового прохода 3% раствором перекиси водорода и протирания до суха ватой два-три раза в день вплоть до выздоровления в ухо впускали по несколько капель 0,5 % раствора химопсина на физиологическом растворе хлорида натрия.

На второй-третий день после оказания лечебной помощи отмечалось усиление выделения экссудата: внутренняя поверхность ушной раковины становилась несколько отечнее, болезненнее и гиперемированнее. В дальнейшем животные переставали трясти ушами и тереть их, выделение экссудата резко уменьшилось, зловоние исчезало. Уменьшались и совершенно исчезали болезненность, гиперемия, отечность ушной раковины, шумы плеска в наружном слуховом проходе и наступало клиническое выздоровление. Три собаки выздоровели через четыре дня, пять — через шесть и три животных с хроническим течением болезни выздоровели через девять-десять дней после начала лечения.

На основании проведенных клинических наблюдений можно заключить, что химопсин при воспалении наружного уха у собак дает хороший терапевтический эффект.

И. Липовцев, профессор Кировского сельскохозяйственного института, В. Соболев, ассистент.
Охота и охотничье хозяйство 1979 — 1

Животные поступали с ярко выраженными клиническими признаками болезни. При острой форме воспаления ( с давностью до двух месяцев) собаки трясли ушами, терли их, чесали лапами, держали голову с наклоном в сторону пораженного уха. Из наружного слухового прохода выделялось истечение серозно-гнойного, буроватого цвета, зловонного запаха. При пальпации в основании ушной раковины отчетливо прослушивались звуки плеска. Внутренняя поверхность ушной раковины гиперемированная, отечная, влажная, болезненная.

Добрый день!
Ситуация следующая: в наш посёлок подбросили алабая, суку. Собака молодая, адекватная. Жители посёлка, опасаясь крупной собаки, начали обсуждать, как от неё избавиться, варианты избавления один другого хуже. В итоге её решили взять мои соседи. Ну, как — взять. Забрать с улицы. Но они сами ещё не живут, у них идёт ремонт, и закончится он, видимо, не скоро. Пока договорились, что в их отсутствие кормить и поить собаку буду я.

Но кормление-поение — это мелочи. Есть большая проблема: у собаки страшный отит. Уши снаружи покрыты коростой от расчесов, внутри страшно воспалены: слуховой проход сужен настолько, что ветврачу не удалось заглянуть даже кошачьим отоскопом. Собака почти не слышит, реагирует только на свист, но это не удивительно. Собака молодая, года 1,5-2. По мнению ветеринара, отит развивался очень долго, больше года. В чем первопричина, неясно, а сейчас на фоне воспаления там уже полный букет всей дряни, которая только может быть в ушах.
Малейшее прикосновение к ушам вызывает у собаки стон.
Обрабатывать уши пока совершенно нереально, назначен антибиотик, антигистаминное, нпвс. Лечимся уже 9 дней. В первые дни собаке явно полегчало, стала веселее, слизистые стали не красными, а розовыми, истечения из глаз ушли. Но последние три дня Майе опять нехорошо: плохой аппетит, настроение не айс, УЖАСНО трясёт головой и чешет уши. Скулит.

Вопрос. Учитывая, что собака очень крупная, не мной выращена/воспитана, а прикосновения к ушам мучительны, проводить регулярные процедуры с ушами я просто боюсь. А явно нужно.
Понимаю, что прошу луну с неба, но очень нуждаюсь в совете: чем лечить уши с минимальными обработками ушей?

Добрый день!
Ситуация следующая: в наш посёлок подбросили алабая, суку. Собака молодая, адекватная. Жители посёлка, опасаясь крупной собаки, начали обсуждать, как от неё избавиться, варианты избавления один другого хуже. В итоге её решили взять мои соседи. Ну, как — взять. Забрать с улицы. Но они сами ещё не живут, у них идёт ремонт, и закончится он, видимо, не скоро. Пока договорились, что в их отсутствие кормить и поить собаку буду я.

От нижнечелюстной ветви тройничного нерва к ушной раковине отделяется n.auriculo-temporalis (n. temporalis superficialis), разделяющийся на ram.auricularis и ram.temporalis. Первый из них покрыт околоушной железой, направляется к ушной раковине и связывается с n.auricularis anterior. Он является чувствительным нервом, иннервируя кожу на краниомедиальнои поверхности ушной раковины.

От лицевого нерва под околоушной железой отходит n. auricularis posterior, который разветвляясь на 3—5 ветвей, снабжает кожу каудальной поверхности ушной раковины и анастомозирует с n.occipitalis magnus (ветвь второго шейного нерва). От лицевого нерва под околоушной железой отделяется ветвь n.auricularis intemus, которая через отверстие ушной раковины выходит на внутреннюю поверхность железы и там разветвляется. Ответвление этого нерва — ram.zigumaticotemporalis дает, в свою очередь, веточку к ушной раковине n.auricularis anterior.

От блуждающего нерва из ganglion jugulare отходит ушная ветвь, которая, проходя через среднее ухо, дает волокна к n.facialis, выходит с ним из for.stylomastoideum, идет в наружный слуховой проход вверх и снабжает кожу внутренней поверхности слухового прохода и ушной раковины.

От второго шейного нерва отделяются две большие ветви: n.auricularis magnus et n.occipitalis magnus, снабжающие кожу каудальнои поверхности ушной раковины.

Как следует из вышесказанного, нервные ветви в форме сплетения окружают основание ушной раковины спереди, сбоку и сзади. Они доступны для местной анестезии. Обезболивание этих ветвей может быть осуществлено или путем циркулярной инфильтрации, или образованием новокаинового депо, с учетом направления главнейших нервов и расположения их сплетений.

Инфильтрационная анестезия состоит в циркулярной инфильтрации у основания ушной раковины 0,5% раствором новокаина; инъецируют до 20 мл раствора.

Этим методом нельзя блокировать n.auricularis interims, поскольку он покрыт околоушной железой и находится вне досягаемости раствора анестетика

Бесспорным преимуществом обладает проводниковая анестезия, фактически осуществляемая из одной точки укола.

Проводниковая анестезия по Жемайтису. Ушную раковину слегка оттягивают в дорзолатеральном направлении, захватив у основания указательным и большим пальцами левой руки. Этими же пальцами находят на основании раковины околоушную железу. Затем указательным пальцем нащупывают верхний край железы против основания ушной раковины и вводят иглу на глубину 0,5 см под железу. После депонирования 2-3 мл 2% раствора новокаина иглу извлекают с таким расчетом, чтобы ее кончик остался под кожей; далее иглу продвигают подкожно по направлению к заднему краю ушной раковины и вновь вводят 3-4 мл (сзади ушной раковины). Наконец, третье депо создают под кожей спереди основания ушной раковины (Рис.7).

Рис.7. Схематическое изображение обезболивания ушной раковины. 1 — zygomatic arch; 2 — r.zygomaticus; 3 — parotid salivary gland; 4 — n.auriculopalpebralis; 5 — internal acoustic meatus; 6 — external acoustic meatus et concha; 7 — v.et n.auricularis caudalis; 8 — r.r.colli; 9 — v.maxillaris; 10 — n.n.auricularis magnus et transversus colli; 11 — v.linguofacialis; 12 — mandibular salivary gland; 13 — места введения анестетика (обозначены заштриховаными кругами).

Аурикулопальпебральная блокада проводится следующим образом: игла вводится перпендикулярно поверхности субфасциально в месте пересечения скуловой дуги и верхнего края околоушной слюнной железы.

Сакральная анестезия — является разновидностью паравертебральной и используется для небольших по объему операций на тазовых органах, прямой кишке, хвосте. Анестетик вводится в hiatus sacralis в объеме 10—20 мл 0,5-1% раствора новокаина с двух сторон (рис.8).

Рис.8. Схематическое изображение проведения сакральной анестезии. — hiatus sacralis; 2 — lumbosacral junction; 3 — lumbar vertebra VII; 4 — sacrum.

Пресакральная анестезия — может использоваться как вариант сакральной для небольших операций на прямой кишке, параанальной области, промежности, хвосте. Анестетик вводится в точку, расположенную между основанием хвоста и перианальной нишей посередине на глубину 5—10 см (рис.9). Введению иглы предпосылается анестетик и в конце “водится 20—50 мл 0,5% раствора новокаина.

Рис.9. Схематическое изображение проведения пресакральной анестезии 1 — sacrum; 2 — место введения анестетика; 3 — rectum; 4 — n.n.sacrales, isehiadicus; 5 — pelvis.

Анестезия челюстной области. Для обезболивания стоматологических вмешательств также может применяться регионарный блок. Обычно используется 1-2% раствор новокаина, тримекаина, лидокаина, ксилокаина. Места введения анестетика приведены на рис. 10.

Рис.10. Схематическое изображение введения анестетиков при проведении стоматологических вмешательств. 1, 2 — n. infraorbitalis; 3, 4 — n. alveolaris mandibularis, 5 — n.mentalis

Спинномозговая анестезия (субарахноидальная) — достигается введением раствора анестетика в субарахноидальное пространство после прокола твердой мозговой оболочки в каудальной части поясничного отдела позвоночника, т.к. здесь спинной мозг представлен так называемым конским хвостом (cauda equina), состоящим из мозгового конуса, конечной нити и нервов — крестцовых и хвостовых (Хромов Б.М., 1972), что позволяет избежать травмирования спинного мозга (Рис. 11).

Рис.11. Схематическое изображение анатомического расположения «конского хвоста» (cauda equina). 1 — ilium; 2 — sacrum; 3 — cauda equioa; 4 — medulla spinalis.

Для проведения спинномозговой анестезии используют специальную иглу с мандреном, срез которого совпадает со срезом иглы. Животные должны находиться в положении «на боку». При этом необходимо согнуть позвоночный столб в поясничном отделе (прижать тазовые конечности к животу), что позволяет расширить промежутки между остистыми отростками позвонков и тем самым облегчить проведение спинномозговой анестезии. Игла вводится перпендикулярно коже между остистыми отростками L₆—L₇ или L₅—L₆ на глубину, которая зависит от массы и размеров животного (собаке до 10 кг — до 3 см). Перед введением спинномозговой иглы сначала проводится анестезия кожи и межостистой связки. Игла вводится до тех пор, пока появится ощущение плотного препятствия, которым является желтая связка. После ее прокола появляется ощущение легкопроходимой субстанции (перидуральное пространство), затем вновь появляется ощущение препятствия — твердая мозговая оболочка. После ее прокола и удаления мандрена из иглы вытекает прозрачная спинномозговая жидкость, которая выделяется сначала струёй, а затем — каплями (Рис.12). В субарахноидальное пространство вводят 0,4-0,8 мл 1% раствора совкаина, до 2 мл 1% раствора дикаина, до 3 мл 5% раствора новокаина. Марек Закиевич (1994) рекомендует вводить 1-2% раствор новокаина из расчета 0,2 мл на кг массы тела. Анестетик быстро связывается с нервными корешками, и наступает анестезия всей части тела, располагающейся ниже места пункции. Длительность анестезии — от 40 мин. до 2,5 ч, в зависимости от используемого анестетика. Если собака теряет опору, это свидетельствует о правильно выполненной анестезии. Такая техника выполнения анестезии возможна только у спокойных, флегматичных животных. У беспокойных животных, мелких собак, кошек спинномозговую анестезию можно проводить в положении животного на боку, после предварительного введения седативных средств.

Этот вид анестезии позволяет проводить операции на органах брюшной полости, таза, нижних конечностях. Недостатками метода являются: развитие в некоторых случаях артериальной гипотензии, задержка мочи на некоторое время, болевой синдром (при случайном ранении иглой спинномозгового корешка), остановка дыхания (при этом осложнении необходима интубация трахеи и проведение искусственной вентиляции легких. При выраженной гипотензии необходимо перелить плазмозамещающие растворы, ввести внутримышечно эфедрин или мезатон).

Перидуральная анестезия — основана на блокаде спинномозговых нервов и их корешков раствором местного анестетика, введенного в перидуральное пространство. Может быть использована при различных операциях на органах брюшной полости, полости таза, конечностях, как компонент обезболивания в торакальной хирургии. Этот вид анестезии показан у животных с высокой степенью операционного риска (противопоказан при хронической гиповолемии). Для проведения этого вида анестезии требуются иглы с мандреном и коротким срезом длиной б—8 см, толщиной 1 мм и иглы с боковым расположением среза (Рис.13).

Рис. 13. Строение инъекционных игл для проведения перидуральной анестезии. 1 — обычная игла; 2 — игла с коротким срезом и мандреном; 3 — игла Туохи с боковым расположением среза для введения в перидуральное пространство катетера.

Для перидуральной анестезии используют 1-2% раствор ксилокаина, лидокаина, 1-2% раствор тримекаина, 0,3% раствор дикаина. Количество анестетика колеблется от 5 до 10 мл. Сначала вводят 1/4 дозы («тест-доза»), а затем через 5 мин. — остальное количество. Обезболивание наступает через 15—20 мин. и длится от 1,5 до 6 часов. Для продления анестезирующего действия анестетик смешивают с кровью больного животного. Для длительного анестезирующего эффекта используют введение катетера в перидуральное пространство при помощи иглы с боковым отверстием и постоянное или фракционное введение анестетика. Катетер в перидуральном пространстве может находиться до нескольких суток. Техника выполнения перидуральной анестезии такая же, как и при спинномозговой анестезии, но игла вводится только в перидуральное пространство, дальше не продвигается, истечения ликвора после удаления мандрена не отмечается (рис.14).

Рис. 14. Схематическое изображение проведения перидуральной анестезии. 1 — lig. flavum; 2 — перидуральное пространство и место введения анестетика; 3 — твердая мозговая оболочка; 4 — спинной мозг, 5 — тело позвонка.

Преимуществом перидуральной анестезии является эффективность действия, возможность проведения ее на любом уровне спинного мозга, возможность использования у животных с высокой степенью анестезиологического риска.

Следует подчеркнуть, что, из-за особенностей анатомического строения позвоночника у животного, этот вид анестезии достаточно сложен в техническом исполнении и требует от анестезиолога определенных навыков; необходимо также досконально изучить особенности строения позвонков в различных отделах позвоночника.

Могут наблюдаться тяжелые осложнения в виде расстройства дыхания и кровообращения. Эти расстройства наблюдаются, как правило, при нераспознанном проколе твердой мозговой оболочки и субдуральном введении анестетика; при передозировке последнего. Лечение принципиально не отличается от такового при осложнениях спинномозговой анестезии.

Внутрикостная анестезия — может быть использована для операций на конечностях. С этой целью конечности придают возвышенное положение, у основания накладывают жгут до исчезновения пульса на периферических артериях. После анестезии кожи и подкожной клетчатки толстой иглой с мандреном вращательными движениями продвигают иглу через корковое вещество кости на глубину 1,0-1,5 см в губчатое вещество. Проколы осуществляют в зависимости от области оперативного вмешательства, но иглу вкалывают в эпифизарную часть кости (мыщелки бедренной кости, в лодыжки, в эпифиз лучевой кости, в локтевой отросток). Анестезирующий эффект наступает через 15—20 мин. после введения 20—100 мл 0,5% раствора новокаина и держится до снятия жгута. Для закрытой репозиции костных обломков может быть использовано введение 1-2% раствора новокаина непосредственно в гематому, образовавшуюся в области перелома (Рис.15). Контролем правильного введения иглы будет появление крови в шприце. Обезболивание наступает через 10—15 мин.

Рис.15. Схема локального обезболивания переломов конечностей. 1 — гематомы в местах переломов и точки введения анестетиков.

Внутривенная регионарная анестезия — применяется для операций на конечностях до верхней трети плеча или бедра. Основана на проникновении анестетика через капилляры и блокировании сначала окончаний, а затем стволов нервов. Обязательно должно быть достигнуто обескровливание конечности и изоляция ее сосудистой сети от общей циркуляции. Сначала на конечность накладывается жгут, после чего анестетик вводится внутриартериально (обезболивание наступает через 2-3 мин.) или внутривенно (обезболивание наступает через 20—30 мин.), в количестве 40—100 мл 0,5% раствора новокаина в зависимости от размеров животного. Обезболивающий эффект наблюдается до снятия жгута. После этого необходимо промыть сосудистое русло изотоническим раствором натрия хлорида в объеме вдвое меньшем, чем объем анестетика.

Блокада поперечного сечения — применяется для транспортного обезболивания при переломах конечностей, а также как один из компонентов противошоковой терапии. Основным принципом этой блокады является введение анестетика в фасциальные футляры конечностей выше места перелома. Игла вводится из двух точек: в переднюю и заднюю группу мышц. Длинной иглой (сообразно размерам животного) прокалывается кожа и подлежащие мышцы до кости. Затем игла оттягивается назад на 0,5-1 см и вводится 0,5% раствор новокаина от 20 до 100 мл в зависимости от величины мышечной массы (Рис.16).

Рис.16. Схематическое изображение проведения блокады поперечного сечения. 1 — линия поперечного сечения бедра; 2—tn.vastus;3—nirectus femons; 4—m.sartorius; 5 —femur, 6 — m.biceps femons; 7 — m.adductor. 8 — rn.semimem-branosus; 9 — m.semitendmosus; 10 — m-gracilis; 11 — фасциальные футляры бедра.

Общая анестезия

Ингаляционный наркоз.

Этот вид наркоза основан на введении в организм анестетиков в виде пара или газа через дыхательные пути. Насыщение организма анестетиками происходит благодаря диффузии их через альвеолы и зависит от концентрации, вида анестетиков, растворимости их в крови и тканях, состояния кровообращения и дыхательной системы. Ингаляционный наркоз более управляем, чем другие виды анестезии, характеризуется более или менее выраженными фазами наркоза, о чем говорилось выше (см. Гл.2). Ингаляционный наркоз проводится по открытому, полуоткрытому, полузакрытому или по закрытому контурам. Вид контура определяется по выходу анестетика в атмосферу.

При проведении наркоза по открытому контуру ингаляционный анестетик вводится в легкие животного вместе с атмосферным воздухом. Выдох осуществляется в атмосферу (наркоз маской Эсмарха).

Полуоткрытый контур предполагает введение газонаркотической смеси в легкие из наркозного аппарата. Выдох производится в атмосферу.

При полузакрытом контуре часть газов возвращается в наркозный аппарат и используется повторно. Избыток газов сбрасывается в атмосферу.

При закрытом контуре выдох газонаркотической смеси осуществляется только через наркозный аппарат.

Полузакрытый и закрытый контуры требуют обязательного использования поглотителя (адсорбера) углекислого газа, т.к. в противном случае развивается гиперкапния.

Отрицательные моменты проведения наркоза по первым двум контурам заключаются в большом расходе ингаляционных анестетиков, присутствии газонаркотических анестетиков в операционной, что оказывает отрицательное воздействие на медперсонал, приводит к возникновению пожаро- и взрывоопасной ситуации. Полузакрытый и закрытый контуры проведения наркоза лишены этих отрицательных моментов, но требуют дополнительного технического оборудования.

В ветеринарной практике чаще используются первые два способа проведения наркоза, т.к. они сравнительно просты, а концентрация наркотических веществ в операционном зале достаточно низкая, т.к. для мелких животных требуются сравнительно небольшие дозы ингаляционных анестетиков.

Неингаляционный наркоз.

Основным способом ведения этого наркоза является внутривенный. Значительно реже применяют внутримышечный, внутрикостный, прямокишечный способы введения анестетика. Обычно применяется какой-либо один из анестетиков: кетамин, ксилазин, оксибутират натрия, барбитураты. Этот вид анестезии имеет свои преимущества, т.к. может быть использован практически в любых условиях, не требует дополнительной громоздкой аппаратуры, сравнительно хорошо переносится животными. Методики проведения этого вида наркоза описаны в Гл.2. К недостаткам этой анестезии относится плохая управляемость (особенно при внутримышечном, внутриплевральном или внутрибрюшинном введении анестетиков), возможность развития кардиальных и дыхательных осложнений через несколько часов после проведения наркоза. Применение этого вида обезболивания сопряжено с большим риском, особенно у ослабленных, старых животных, при длительных операциях.

Рис.10. Схематическое изображение введения анестетиков при проведении стоматологических вмешательств. 1, 2 — n. infraorbitalis; 3, 4 — n. alveolaris mandibularis, 5 — n.mentalis

Отит у собаки зарождается в силу нескольких причин:

Ушной клещ – часто встречающаяся причина воспаления уха у собаки. Инфицирование, возможно, от зараженных животных.
Опухоль становится провокатором отита, если она закупоривает слуховой проход и препятствует «вентиляции» уха.
Аллергия на корм, лакомства, медикаменты и шампунь может повлечь за собой болезнь ушей у собаки.
Инородный предмет, попавший в ухо. Нередко в ухо попадают семена растений, мошки или травинки, вызывая тем самым отит у собаки.

Часто развивается недуг из-за недостаточного ухода за ушами любимца, но бывает и наоборот, чрезмерная чистка ушей приводит к уничтожению защитного слоя, кожного жира и серных выделений.

Причиной также могут стать слабый иммунитет, плохие зубы и сбой гормонального фона.

Во время осмотра врач визуально оценивает признаки отита у собаки: состояние ушных раковин, носоглотки, рта и глаз. Параллельно задавая вопросы о кормлении, прививках и имеющихся патологиях.

Обязательно сдать на анализ соскоб, выделения из уха и кровь. Лабораторные исследования покажут количество бактерий и паразитов, выяснят их адаптированность к лекарственным препаратам. А также определят общее состояние и возможность аллергии.

В некоторых случаях прибегают к рентгенографии. Это происходит, если исследования недостаточно информативны. Она показывает наличие или отсутствие опухолей и полипов в носоглотке. Также, возможно проведение КТ или МРТ, чтобы исключить вероятность воспаления мозга. Некоторые манипуляции могут проводиться под общим наркозом.

Терапия назначается только по результатам анализов. Рассказать, как вылечить отит у собаки должен специалист. Иначе лечение не принесет результатов, и усугубит ситуацию.

Лечение в домашних условиях

Если обнаружен отит у собак, чем лечить в домашних условиях? На первое время можно облегчить состояние питомца и в домашних условиях.

В качестве домашних мер можно применять:

При наличии сильных расчесов внутреннюю поверхность уха протирают перекисью водорода и осторожно высушивают марлевым бинтом. Царапины смазывают зеленкой.
Если скопился гной и ухо «хлюпает», следует аккуратно прочистить борным спиртом, промокнуть насухо и засыпать порошком стрептоцида.
Темный налет могут спровоцировать клещи. В этом случае ушную раковину освобождают от серных скоплений и смазывают фенотиазином.

Проводить манипуляции следует предельно аккуратно, чтобы не вызвать раздражения на пораженных участках.

Помните, что самостоятельное лечение отита у собаки может привести к серьезным осложнениям. Поэтому обращение к ветеринару – это важная мера.

Лечение медицинскими препаратами

Давайте рассмотрим несколько действенных схем, чем лечить отит у собаки. Предложенные жизненные примеры помогут вам сориентироваться и построить правильное лечение вашего питомца.

Вариант 1

Пациент: крупная собака, вес 40 кг, возраст 4 года. Жалобы владельца: не позволяет гладить по голове, у собаки болит ухо. Диагноз: отит экссудативный наружный.

Перекись водорода. Влажным тампоном, протираем нутро ушной раковины и проход. Очищая от корочек, гноя и излишков серы.
Хлоргексидин. Протирать обработанное перекисью ухо полмесяца дважды за сутки.
Бепантен. Промазывать мазью внутренность ушка 2 раза в 24 часа, курс две недели. В тяжелых ситуациях позволено применять Фторокорт или Лоринден.
Софрадекс – вводить по 3-5 капель в оба ушка дважды в день-14 дней.

Синулокс или Кламоксил. Колоть в бедро п одному разу утром, 5-7 дней по 4 мл.
Супрастин. В холку – колем 1 мл утром и вечером – недельным курсом.
Серрата. Необходимо колоть дважды с промежутком 12 часов по 1 пилюле – 10 дней.

Вариант 2

Пациент: кобель, возраст – 7 лет, вес – 12 кг. Жалобы владельца: собака беспокойная, течет из уха. Диагноз: гнойный средний отит в хронической стадии.

Перекись – дважды в день, две недели.
Хлоргексидин – двухразовая обработка до двух недель.
Бепантен – дважды в день в течение двух недель.
Софрадекс – по 3-5 капель через 12 часов. Курс лечения – две недели.

В тяжелом положении допустима следующая смесь капель:

Цефтриаксон 1 флакон + Диоксидин 10 мл + 5 мл Новокаин 0,5% + Супрастин 2 мл + Дексометазон 3 мл + витамин В12 2мл +Димексид 0,5-1 мл. Данную суспензию нужно вводить по 3-5 капель в оба ушка с 12 часовым промежутком. Курс лечения длится 14 дней.

На ночь необходимо накладывать марлевый тампон, смоченный в смеси: 2 мл Линкомицина, 1 мл Дексаметазона, Супрастина 1 мл и Новокаина 2% 3 мл. Лечение должно продолжаться 10 ночей.

Синулокс – внутримышечно 3 мл один раз, курс лечения – неделя. Допустим и Цефограм 1 флакон смешать с Лидокаином 8 мг. 2,5 мл составленного препарата колоть 1-2 раза в сутки.
Супрастин – колем 0,5 мл в наружную часть бедра, утром и вечером на протяжении 7-ми дней.
Серрата – дважды по капсуле – не дольше 10 дней.
Лиарсин – 1 пилюля 2 раза в день – 10 дней.
Мезим – на протяжении 12-14 дней принимать по 1 капсуле дважды в сутки.

Также может быть полезна блокада новокаином в корень уха. Для этого используется новокаин 05%, по 7 мл дважды в день. Срок лечения – 1 неделя.

Антибиотики при отите у собак нужно принимать с осторожностью, например, при повреждении барабанной перепонки, противопоказаны капли с ототоксичным антибиотиком в составе.

Блохи, клещи, власоеды и другие паразиты повреждают кожный покров, и стартует точечное воспаление.

Воспаление наружного уха у собак регистрируют довольно часто. Заболевание иногда протекает длительное время.

Как известно, для лечения данного заболевания предложено много различных способов: блокада ушных нервов; обработка йодглицерином, 2% раствором нитрата серебра, борным спиртом, на стойкой сабура, перекисью водорода; промывание наружного слухового прохода теплым раствором гидрокарбоната натрия и применение после этого танина с глицерином (1:20), 2% раствора цинка сульфата, креолина (1:200), этакридина лактата (1:500), присыпка порошком белого стрептоцида. При сильном зуде ушной раковины назначают ментол на вазелиновом масле 1 — 5% концентрации, жидкость состава: анестезин — 1,0, новокаин — 1,0, ментол 1,0, спирт этиловый 70 — 100,0 и т. д.

Однако эти методы не всегда дают положительный терапевтический эффект, поэтому решено было испытать для лечения воспаления наружного уха химопсин, применяемый в медицине при хронических гнойных отитах.

После обработки ушной раковины и наружного слухового прохода 3% раствором перевиси водорода и протирания до суха ватой два-три раза в день вплоть до выздоровления в ухо впускали по несколько капель 0,5 % раствора химопсина на физиологическом растворе хлорида натрия.

И. Липовцев, профессор Кировского сельскохозяйственного института, В. Соболев, ассистент.
Охота и охотничье хозяйство

Однако эти методы не всегда дают положительный терапевтический эффект, поэтому решено было испытать для лечения воспаления наружного уха химопсин, применяемый в медицине при хронических гнойных отитах.

Ухо – орган слуха и равновесия у позвоночных животных, периферическая часть слухового и вестибулярного анализаторов. [1] Представляет собой сложный комплекс структурных элементов. В нем расположены рецепторы, обеспечивающие восприятие звуковых колебаний, вибрационных, гравитационных сигналов и преобразование их в слуховые ощущения. [2]

С болезнями ушей своих питомцев сталкивается практически каждый владелец собаки. В настоящее время среди всех патологий, которые встречаются в ветеринарной практике, до 20% приходится на заболевания органа слуха. Именно поэтому повышается интерес ученых и практикующих врачей к данной группе заболеваний. [2,3]

Широкое распространение патологий органа слуха у собак связано как с полиэтиологической природой, так и с рядом предрасполагающих факторов. [4] На сегодняшний день известно около 37 причин, приводящих к развитию отита у собак и кошек, и это еще далеко не полный перечень. Необходимо отметить, что длинноухие собаки болеют чаще, чем короткоухие. Выделяют даже породы собак, предрасположенные к отиту наружного слухового прохода: кокер–спаниель, французские бульдоги, пудели, немецкие овчарки. Кроме того, существует и сезонная зависимость: весной и летом увеличивается количество заболеваний органа слуха, связанных с эктопаразитами и инородными телами. Осенью данная проблема приобретает особую актуальность, так как является следствием снижения общего и местного иммунитета животных. [3,5,6]

По данным литературных источников основными патологиями органа слуха у собак являются: гематома ушной раковины, воспаление наружного, среднего и внутреннего уха, отодектоз, дерматиты, экземы, аденома церуминозных желез, инородные тела в наружном слуховом проходе и др. [5,7]

Кроме того, воспаление наружного слухового прохода часто приобретает рецидивирующих характер, что является следствием широкого и бесконтрольного применения антибиотиков, кортикостероидов и цитостатиков. [7] Именно поэтому лечение заболеваний органа слуха требует быстрого и комплексного подхода. Существует множество консервативных и оперативных методов лечения гнойного отита, однако ни одной из разработанных схем не удается полностью решить проблему.

Целью нашей работы поставлено оценить эффективность консервативного и оперативного методов лечения хронического гнойного отита у собак.

Материал и методы исследования. Работу проводили на базе клиники кафедры хирургии и акушерства ЮФ «КАТУ» НАУ, частной ветеринарной клиники г. Севастополя и клиник г. Симферополя в период с 2007 по 2008 гг.

Материалом для исследования служили больные собаки разных возрастных групп и пород. На основании клинических исследований были отобраны пациенты с заболеваниями органа слуха, из них выделено 21 собаку с хроническим гнойным отитом. Диагноз был поставлен на основании анамнестических данных и характерных клинических признаков.

По мере поступления животных в клинику они подвергались комплексному консервативному лечению по следующей схеме:

1. Односторонняя блокада ушной раковины 0,5%-м раствором новокаина с добавлением 250 000 ЕД ампициллина. Один раз в три дня, всего две блокады.

2. В наружный слуховой проход инстиллировали ушные капли с 10%-м димексидом на 2%-м растворе новокаина. Применяли 5–6 раз в сутки по 3–4 капли в течение 2–3 недель, надавливая на основание уха для лучшего прохождения раствора.

3. Предварительно ушную раковину и наружный слуховой проход очищали от экссудата, гнойных корочек при помощи ватной палочки, смоченной в 3%-м растворе перекиси водорода. Обработку язвочек и эрозий проводили 5%-м спиртовым раствором йода. Такую процедуру проводили по возможности перед каждым применением ушных капель.

При необходимости назначали курс витаминных препаратов (витамины группы В: В1, В6, В12; аскорбиновая кислота, токоферола и ретинола ацетат) в общепринятых дозах. Кроме того, в случаях снижения общей резистентности организма применяли иммуностимуляторы (эхинацея) и гепатопротекторы (эссенциале).

Такую схему лечения проводили у 21-го животного с односторонним хроническим гнойным отитом. Наблюдение за больными собаками вели на протяжении всего периода лечения с периодичностью 1 раз в 4–5 дней. При отсутствии эффекта пяти животным было выполнено хирургическое удаление наружного слухового прохода.

При подготовке к операции проводили клинический осмотр собак. Учитывали общее состояние, температуру, пульс, частоту дыхания.

Данное оперативное вмешательство проводили под общим наркозом. Наркоз вводили в виде литической смеси кетамина и ксилазина (ксилы) внутримышечно. Кетамин применяли в виде раствора для инъекций концентрацией 50 мг/мл в дозе 10-20 мг/кг массы тела. Ксила «Интерхеми» концентрацией 20 мг/мл в дозе 0,15 мл/мг массы тела. Для местного обезболивания использовали 2%-й раствор новокаина.

Операцию проводили следующим образом: животное уложили на бок, голову запрокинули назад. Провели подготовку операционного поля, тщательно очистили слуховой проход и внутреннюю поверхность ушной раковины. Разрез кожи сделали параллельно козелку и в непосредственной близости от него. Кожу и подкожную мышцу рассекли латерально над пальпируемой ушной частью слухового прохода. Разрез провели в вентральном направлении и закончили ниже места перехода в горизонтальную часть. После остановки кровотечения по кругу выделили вертикальную часть слухового прохода от места изгиба в дорсальном направлении. Таким образом, полностью выделили ушной участок наружного слухового прохода. Вход в наружный слуховой проход иссекли циркулярно на том же уровне. Каудальную часть околоушной слюнной железы обнажили и отделяли посредством препаровывания. Затем выделили лицевой нерв и находящиеся в вентральном углу раны кровеносные сосуды. Для открытия горизонтальной части ушного прохода их захватили петлей и осторожно отвели в сторону. Полукруглый и панцирный хрящи изолировали до костной части наружного слухового прохода в непосредственной близости от хряща из–за опасности повреждения нервов и кровеносных сосудов. После чего хрящевую часть слухового прохода отделяли от наружного слухового отверстия. Оставшиеся части хряща до кости удаляли при помощи кусачек. Эпителиальное покрытие костной части слухового прохода тщательно выскоблили острой кюреткой, для предотвращения дальнейшего образования ушной серы. Затем околоушную железу переместили обратно, а подкожную мышцу шеи сшили кетгутом. В нижнем углу раны установили дренаж, а Т–образный разрез на коже закрыли четырьмя узловатыми швами.

Собаке с двусторонним гнойным отитом оперативное лечение проводили в два этапа: сначала оперировали одно ухо, а через 14 дней – второе.

В послеоперационный период рекомендовано проводить анальгезию в течение первых 12–24 часов. Наблюдение за прооперированными животными вели на протяжении всего периода заживления операционной раны с периодичностью 1 раз в 3 дня, при этом измеряли температуру, пульс, дыхание, оценивали состояние операционной раны и проводили курс лечения.

Результаты собственных исследований. За период исследований с 2007 по 2008 гг. было принято 2165 собак, из них 215 с различными заболеваниями уха, что составило 9,9%. Среди 215-ти животных с патологией органа слуха выявлено 117 с гнойным отитом различной этиологии (54,4%). У 45-ти (38,5%) отмечали острое течение, а у 72-х (61,5%) – хроническое. У 40 собак (34,2%) процесс был двусторонний, а у 77-ми (65,8%) односторонний. В 43-х (36,6%) случаях болели животные в возрасте от 3-х до 5-ти лет, а наибольшее количество рецидивов (3–4 и более) наблюдалось у 53-х собак (45,3%) старше 5-ти лет. У 3-х животных (8,5%) хроническая форма заболевания продолжалась всю жизнь с периодическими обострениями в основном осенью и весной.

При проведении исследований было отмечено, что сезонность данной группы заболеваний слабо выражена. Однако большое количество заболевших животных были зарегистрированы именно в весенне–летний период. Что касается хронического гнойного отита, то его обострение непосредственно зависит от времени года, так как связано со снижением общего и местного иммунитета.

Одними из самых распространенных причин возникновения хронического гнойного отита у собак являются:

· попадание воды в уши при купании, регистрировалось у 32-х собак (27,4%);

· травма и попадание инородных тел в наружный слуховой проход при охоте в холодную сырую погоду у 28-ми (23,9%);

· развитие заболевания из–за снижения общей резистентности организма у 15-ти (12,8%) животных.

Чаще всего хронический гнойный отит регистрировался у кокер–спаниелей (45 – 38,5%), немецких овчарок (17 – 14,5%), такс (13 – 11,1%) и стафордширских терьеров (11 – 9,4%). Реже у французских бульдогов, пуделей, сеттеров, пекинесов, шарпеев и беспородных собак.

За период исследования нами было проведено общее и местное клиническое обследование 21-го животного с хроническим гнойным отитом.

При проведении клинического обследования всех животных было установлено, что гнойный отит сопровождался следующими клиническими признаками: повышение температуры — 39,2±0,4°С, учащение пульса – 126,8±9,2 уд/мин, учащение дыхания – 25,2±6,5 дых. дв/мин. Общее угнетение, снижение аппетита, тусклый шерстный покров, болезненность в области уха, гиперемия наружного слухового прохода, выделение гнойного экссудата, наклон головы в сторону больного уха.

Лечение 16-ти собак проводили в клинике консервативным способом по разработанной схеме, описанной выше.

Через 3 дня у 14-ти животных отмечали общее угнетение, повышение температуры в пределах 39,4±0,2°С, а у 2-х наблюдалось незначительное снижение температуры до 38,9±0,2°С. В области патологического очага отмечали увеличение отека, гиперемию наружного слухового прохода, болезненность, выделение экссудата слизисто–гнойного характера в большом количестве, присутствует флюктуация и хлюпанье в среднем ухе.

На 8-й день у 10-ти животных температура находилась в верхних пределах нормы – 38,7±0,3°С. Отечность и болезненность тканей отсутствовала, гиперемия незначительно снижена, экссудат катарального характера, флюктуация в среднем ухе, на язвах имелись корочки. У остальных собак температура колебалась в пределах 39,0±0,3°С, отечность и болезненность сохранены, наружный слуховой проход гиперемирован, экссудат гнойного характера, но количество его снижено.

На 14-й день температура составляла 38,5±0,3°С. У 7-ми собак отмечали отсутствие отечности и болезненности, гиперемия сохранена, экссудат приобретал серозно–катаральный характер и выделялся в незначительном количестве, отмечалось заживление язв. У остальных животных имелась незначительная отечность и болезненность, гиперемия слухового прохода, экссудат липкий, вязкий, мутный, катарального характера.

К 21-му дню отмечали достаточно хорошее состояние 5-ти животных, отсутствие болезненности, отечности, гиперемии наружного слухового прохода и экссудата – выздоровление. У 4-х собак отсутствовали отечность и болезненность, но поверхность слухового прохода была гиперемирована и покрыта серозным экссудатом. У остальных 7-ми животных отмечали гиперемию и отечность наружного слухового прохода, экссудат выделялся в незначительном количестве и имел серозно–катаральный характер.

К 25-му дню еще у 4-х собак отмечали выздоровление. У 2-х отсутствовали отечность и болезненность, а поверхность слухового прохода была покрыта серозным экссудатом. У 5-ти животных улучшений в области патологического очага не происходило.

К 28-му дню еще у 2-х собак отмечали отсутствие экссудата и признаков воспаления. Что же касается оставшихся 5-ти животных, то их полного выздоровления не произошло, отмечали лишь временное затухание воспалительного процесса. В течение месяца они снова поступили в клинику с признаками гнойного отита.

В качестве альтернативы консервативному лечению 5-ти собакам провели хирургическую операцию по удалению наружного слухового прохода под общим обезболиванием способом, описанным выше. В ходе операции всем животным был полностью удален наружный слуховой проход, края раны плотно сомкнуты четырьмя узловатыми швами, а лечение проводилось асептической операционной раны.

Наблюдения за животными вели на 3-й, 7-й, 11-й, 14-й и 21-й день при этом оценивали клинические показатели (температуру, пульс, дыхание), а также состояние операционной раны. Швы снимали на 11–14-й день, после снятия швов животное считали клинически здоровым.

Из 5-ти прооперированных собак у 4-х заживление шло по первичному натяжению. После наложения швов узкая раневая щель заполнялась небольшим количеством крови и серозно–фибринозным экссудатом. Через несколько минут кровь свертывалась, а фибриноген экссудата выпал в виде пленки, склеившей края раны.

К 3-му дню животные несколько угнетены, аппетит удовлетворительный. В области раны наблюдалась отечность шириной 1,5–2,5 см, область отека мягкая, болезненная. Местная температура значительно повышена по сравнению с окружающими тканями. Края раны были гиперемированы, четко выступали над поверхностью тела в виде валика. В области раневой щели образовалась корочка из свернувшейся крови и выпавшего фибрина. Температура тела была повышена и колебалась в пределах 39,2±0,4°С.

К 7-му дню в области раны наблюдали снижение отечности, зона отека уменьшилась до 1–1,5 см, плотноватой консистенции, болезненность сохранялась. Температура тканей в области раны незначительно повышена. При пальпации в области мышечного шва хорошо прощупывался формирующийся рубец. Гиперемия краев раны была заметна, но выражена нечетко. Температура тела составляла 39,0±0,3°С. Поверхность раневой щели сухая, чистая.

К 11-му дню состояние животных удовлетворительное, аппетит хороший. В области раны формировался плотный рубец, при пальпации однородный. Отечность отсутствовала, температура в области операционной раны не отличалась от температуры окружающих тканей. Ширина рубца составляла 0,5–0,9 см. Животные не проявляли беспокойства при осмотре раны. Края шва не отечны и без признаков гиперемии. Температура тела животных не превышала физиологическую норму и колебалась в пределах 38,5±0,4°С.

На 14-й день сняли швы у 4-х собак, при этом отмечали хорошо выраженный рубец и прочно сращенные края.

У одной собаки на 5-й день произошло нагноение шва. При этом было зафиксировано повышение температуры до 39,2°С. Края раны в области шва значительно гиперемированы, раневая щель заполнена липким экссудатом. Область раны обработана присыпкой для ран, а за животным установлено тщательное наблюдение.

На 7-й день температура повысилась до 39,5°С, состояние животного было угнетенное. Края раны в области шва значительно гиперемированы и отечны. Собаке был назначен препарат Биодеексамин в дозе 0,8мл, курс 5 дней. В состав 1 мл препарата входит прокоин пенициллин 200 000 ЕД, дегидромицина сульфат 250 мг, дексаметазона 1 мг, трипенеламина хлорид 10 мг.

На 9-й день температура тела составила 39,0°С, в области шва отметили ограниченные флюктуации. После снятия шва наблюдалось выделение гноя, незначительное расхождение краев раны в одном месте. На рану был наложен линимент Вишневского и продолжена антибиотикотерапия.

На 12-й день температура составила 38,8°С, собака находилась в удовлетворительном состоянии, аппетит был хороший. Область раны болезненна, края неровные, гиперемия в области шва сохранена. Выделений гноя из раны не наблюдалось, в месте расхождения шва заметны ярко–розовые грануляции. Линимент Вишневского заменили на левомиколь.

Животное считали клинически здоровым на 21-й день после рубцевания и эпителизации в области шва.

Таким образом, можно сделать вывод, что консервативное лечение обеспечивает выздоровление на 21–28 день только в 68,8% случаев, и только хирургическое вмешательство дает 100% выздоровление на 14–21 день.

1. Анатомія свійських тварин: Підручник / С. К. Рудик, Ю. О. Павловський, Б. В. Криштофорова та інш. – К.: Аграрна освіта, 2001. – 575 с.

2. Куліда М. Характеристика асоційованої мікрофлори, виділеної із зовнішнього слухового ходу в собак з патологією органа слуху. – 2006. — №6. – С. 21–23.

3. Куліда М. Характер та чутливість мікрофлори зовнішнього слухового проходу собак, хворих на зовнішній отит //Ветеринарна медицина України. – 2007. — №6. – С. 26–29.

4. Степаненко М. В. Лечение домашних плотоядных при хроническом воспалении наружного уха // Ветеринария. – 2002. — №4. – С. 48–49.

5. Ветеринария: учебное пособие для студентов / Н. А. Слесаренко, Ф. И. Василевич, А. В. Жаров и др.. – М.: Академия, 2005. – 400 с.

6. Современный справочник врача ветеринарной медицины / В. Г. Гавриш, С. П. Убираев, В. А. Сидоркин и др. / Под общей редакцией В. Г. Гавриша и В. А. Сидоркина. – Ростов-на-Дону: Феникс, 2007. – 608 с.

7. Шебиц Х., Брасс В. Оперативная хирургия собак и кошек / Перевод с нем. М. Степанкин, В. Пулинец. – М.: ООО Аквариум ЛТД, 2001. – 512 с.

На 14-й день сняли швы у 4-х собак, при этом отмечали хорошо выраженный рубец и прочно сращенные края.

Давайте будем совместно делать уникальный материал еще лучше, и после его прочтения, просим Вас сделать репост в удобную для Вас соц. сеть.

02 Дек 2020 veterinar77 89